صفحه محصول - دانلود ادبیات نظری تحقیق گیاه علوفه ای سورگوم

دانلود ادبیات نظری تحقیق گیاه علوفه ای سورگوم (docx) 24 صفحه

دسته بندی : تحقیق

نوع فایل : Word (.docx) ( قابل ویرایش و آماده پرینت )

تعداد صفحات: 24 صفحه

قسمتی از متن Word (.docx) :

مقدمه نگرش عميقتر به گياهان علوفهاي با توجه به افزايش تقاضا براي غذا به علت رشد فزاينده جمعيت و اهميت پروتئين در جيره غذايي مردم و از آنجائيکه اين پروتئين بطور عمده از طريق فرآوردههاي دامي تأمين ميشود، ضروري است. نقش گياهان علوفهاي درتوليد دام و در نتيجه تأمين نياز انسان به فرآوردههاي دامي از اهميت غير قابل انکاري برخوردار است. با اين وجود، متأسفانه در کشور ما به توليد و مديريت گياهان علوفهاي در مقايسه با ساير محصولات زراعي کمتر توجه شده است براي جبران کمبود علوفه نياز به گياهاني است که ضمن توليد علوفه بيشتر و کيفيت مناسب، نسبت به شرايط نامساعد محيطي نيز مقاوم باشند تا در طول سال به خصوص فصلهايي از سال که کمبود علوفه به صورت حادتر مطرح ميشود بتوانند توليد داشته باشند و نياز دامها را تامين نمايند. در اين راستا سورگوم نه تنها از عملکرد بالايي برخوردار است بلکه با شرايط اقليمي اکثر مناطق ايران به خصوص مناطق گرم و خشک و معتدل سازگاري خوبي دارد (فومن و همکاران، 1387). سورگوم از نظر اهميت غذايي پنجمين غله دنيا پس از گندم، ذرت، برنـج و جـو محسوب ميشود. مهمترين کشورهاي عمده توليد کننده سورگوم آمريکا، هندوستان، آرژانتين، چين، مکزيک، نيجريه و سودان هستند. سورگوم در شمال و جنوب آمريکا، اروپا و استراليا به مصرف تغذيه دام ميرسد اما در آسيا، آفريقا و آمريکاي مرکزي بيشتر مصرف خوراکي دارد (FAO, 1989). سورگوم گياه مقاومي بوده و در شرايطي که براي بيشتر غلات نامناسب است قادر به توليد بذر ميباشد. به دليل مقاومت اين گياه نسبت به خشکي، براي مناطقي که بارندگي منظمي ندارد گياه مناسبي است (Purseglove., 1972). اگرچه پتانسيل عملکرد آن شبيه ذرت (Pickett and Fredericks., 1959) ميباشد، ولي کشت اين گياه در مناطق نيمهخشک حارهاي که ميزان بارندگي سالانه بيش از 500 ميليمتر بوده معمول است. در اين مناطق بارش ساليانه در خلال دو تا هفت ماه از سال، بيشتر از ميزان تبخير و تعرق ميباشد. بهبود و افزايش عملکرد سورگوم منوط به شناخت بهتر صفات فيزيولوژيکي و رشد و نمو آن است. - تاريخچه سورگوم سورگوم از قديمالايام در ايران وجود داشته وبعد از کشور يمن، در خاورميانه بيشترين توده بومي (421 توده) از ايران جمعآوري شده است (فومن و همکاران، 1385). علاوه بر ساير مصارف معمول، اولين بار ايرانيان باستان شيره گياه Sorghum Saccharatum را به منظور تهيه شکر مورد استفاده قرار دادند (فومن 1389). با توجه به کمبود علوفه در ايران، نوع علوفهاي آن اولويت دارد و سطح زير کشت آن در ايران بيشتر از 40000 هکتار است (کيخاني و همکاران، 1389). پراکندگي جغرافيايي سورگوم از طريق جاده ابريشم صورت گرفته و از آسيا به ساير مناطق دنيا راه يافته است. سوابق نشان ميدهد که سورگوم در حدود 1900 سال قبل از ميلاد مسيح در قاره آسيا و به بويژه در هندوستان کشت ميشده است. در قرن چهارم ميلادي نيز اين گياه در چين و در قرن پانزدهم در اروپا رايج شده است و به سرعت رونق يافته است. برخي کاشت اين گياه را در آمريکا از حدود سال 1707 ميلادي و همراه با تجارت بردگان به اين کشور ميدانند (پورکاظم، 1387). شناسايي، نامگذاري و طبقهبندي جنسها و گونههاي متعدد اين گياه از قرن شانزدهم توسط گياهشناسان آغاز شد و هر کدام تحت اسامي خاصي اين گياه را معرفي کردند و بعضاً گونههاي جديدي را به جمع گونههاي شناسايي شده، افزودند. طبقهبندي اين گياه نشيب و فرازهايي را طي کرد تا اينکه مونش در سال 1794 کلمه سورگوم را براي اين جنس انتخاب نمود و از آن تحت عنوان Sorghum Bicolor نام برد و تا کنون نيز تحت همين نام بکار رفته است. اسنودن طبقه بنديهاي گذشته را تکميل و 31 گونه زراعي و 17 گونه غيرزراعي اين گياه را تشريح کرد (پورکاظم 1387). - کشت سورگوم در ايران با توجه به سازگاريهاي اکولوژيک خاص اين گياه که مناسب با شرايط موجود در ايران است در 40 هزار هكتار از اراضي ايران كشت ميشود. در مناطق مرطوب با استفاده از ارقام مناسب و در مناطق سرد با رعايت تاريخ كاشت در اواخر بهار و اوايل تابستان كشت آن امكانپذير است. آزمايشات نشان ميدهد سورگوم دانهاي در اكثر مناطق ايران كه 140-90 روز داراي درجه حرارت بالاي 15 درجه سانتيگراد باشند با استفاده از ارقام و واريتههاي مناسب و رعايت تاريخ كاشت قابل كشت است در ايران، سورگوم در اردستان و يزد از سالها قبل کشت ميشده است. در سيستان و بلوچستان نيز سورگوم دانهاي کشت و از آن نان تهيه ميکردهاند. همچنين در مناطق گرم استان فارس از جمله کازرون سورگوم کشت ميشود. در کرمان و بنادر جنوب نيز سورگوم کشت و به مصرف تغذيه دام ميرسيده است (عادلي، 1374). سورگوم گياهي است که مقاومت بالا به شرايط نا مساعد محيطي دارد و در شرايطي كه براي بيشتر غلات نامناسب است قادر به رشد و توليد بذر ميباشد (المدرس‏، 1387). سورگوم داراي خصوصيات زراعي بسيار خوب از جمله رشد سريع بوده و در مدت زمان كوتاهي در حدود 50 روز (البته بسته به شرايط آب و هوايي) محصول قابل توجه توليد ميكند. سورگوم محصولي با تنوع ژنتيكي بالا است و ويژگيهاي كيفي مانند وجود تانن در دانه موجب كاهش ارزش غذايي‏، كاهش قابليت هضم و كاهش نسبت كارايي پروتئين آن ميشود (Ejeta., 1990). در برخي واريتهها حضور پلي فنولها دانه را تلختر و بد طعم ميسازد اما همين پلي فنولها به حفظ دانه در برابر حمله حشرات و پرندگان و جوانهزني پيش از برداشت كمك ميكنند. دانههاي سورگوم معمولا به رنگهاي سفيد‏، قرمز، زرد و يا قهوهاي ديده ميشوند (Butler., 1990). - گياهشناسي سورگوم . سورگوم با نام علميSorghum biocilor (L.) Moench يکي از گياهان خانواده غلات (زهتابيان و چاهوکي، 1389) و يکي از پنج گياه زراعي عمده دنيا محسوب ميشود و امروزه بعد از چهار گياه گندم، برنج، جو و ذرت مقام پنجم را دارا ميباشد (فومن، 1389؛ کليدري و همکاران، 1386). سورگوم گياهي يکساله، روزکوتاه با 6 درصد گرده افشاني غيرمستقيم و از نظر فتوسنتزي جزو گياهان 4 کربنه است (پورکاظم، 1387). اين گياه داراي سيستم ريشهاي افشان و بسيار توسعه يافتهاي است. به طور متوسط تا عمق 50-40 سانتيمتري (حداكثر تا عمق 90 سانتي متري) در خاك نفوذ ميكند و بصورت جانبي تا 40 سانتيمتر گسترش مييابد هر چند گسترش ريشه تا شعاع 120 سانتيمتري اطراف گياه نيز مشاهده شده است. از ديگر خصوصيات ريشههاي سورگوم، داشتن مقادير بسيار زيادي تار كشنده است كه ميزان آن در يك سانتيمتر مربع تقريبا 2 برابر بيشتر از ذرت است (نورمحمدي، 1380). رشد و پراكنش سيستم ريشهاي سورگوم تحت تاثير رطوبت خاك، مقاومت فيزيكي خاك و تخلخل خاك قرار ميگيرد (مظاهري، 1377). گمان ميرود كه ذخاير سيليسي موجود بر روي آندودرم ريشه سورگوم منجر به محكم شدن ريشه در خاك و كمك به تحمل تنش خشكي ميشود. ساقه سورگوم مستقيم با پوسته محكم و مغز نرم ميباشد. ارتفاع گياه از 3/0 تا 5/4 متر متغير و داراي 20-7 ميانگره است. فاصله ميانگرهها از پايين به طرف بالا افزايش مييابد، قطر ساقه از پايين به طرف بالا كاهش پيدا ميكند و بين 4-1 سانتيمتر متغير است. ساقه سورگوم آبدار و ميزان شيره ساقه در برخي ارقام 48-38 درصد ميرسد. بالا بودن شيره ساقه باعث افزايش مقاومت سورگوم نسبت به ورس‏، بيماريها و بالا رفتن ارزش علوفهاي آن ميگردد (نور محمدي، 1380). معمولا تعداد پنجه هر بوته بين 4-3 عدد و در مواردي به 10 عدد نيز ميرسد. البته رقمهاي دانهاي سورگوم در جهتي اصلاح شدهاند كه تعداد پنجه كمتري توليد ميكنند. قطر ساقه سورگومهاي دانهاي معمولا بيشتر از بقيه انواع سورگومها ميباشد (Martin et al., 1986). برگهاي سورگوم متناوب، سرنيزهاي يا خطي ـ سرنيزهاي و داراي موم براق در سطح فوقاني ميباشند. لبههاي برگ زبر يا صاف بوده و نوك برگها ممكن است كركدار باشد. تعداد برگها بين 7 تا 24 عدد است كه بسته به واريته و طول فصل رشد تغيير ميكند. برگهاي بالغ داراي 30 تا 135 سانتي متر طول و 5/1 تا 15 سانتيمتر عرض ميباشند. سلولهاي متحرك در قسمت اپيدرم فوقاني باعث پيچخوردن سريع برگها به سمت داخل در اثر تنش آبي ميشوند (House., 1985). پس از كامل شدن رشد ساقه، گلآذين از انتهاي ساقه خارج ميشود كه بسته به رقم و شرايط فشرده است ولي در انواع سورگومهاي ديگر گلآذين معمولاَ به شكل نيمهفشرده باز است. در سنبلچـه دو گل وجـود دارد كه يكـي بارور و ديگري عقيم است. يك گل آذين سـورگوم 5000-1000 (به طور معمول 3000-1500) گل توليد ميكند و ميتواند 75-15 ميليون دانه گرده را آزاد نمايد (نورمحمدي، 1380). گلدهي حدود 10-6 روز طول ميكشد و در بعضي ارقام كه گلآذين بلندتر و بزرگتر ميباشد اين مدت زمان ممكن است تا 15 روز طول بكشد (كريمي، 1384). عمر گرده سورگوم چند ساعت بيشتر نيست ولي كلالهها حدود 20-18 روز آماده پذيرش گرده هستند. سورگوم گياهي كاملاً بارور است و نزديك به 96% خودگشني دارد و ميزان دگرگشني آن 6-4% است (كريمي، 1384؛ نورمحمدي، 1380). دانه سورگوم به شكل تقريباً گرد و بيضوي است. دانهها به رنگهاي مختلف همچون قرمز، سفيد و قهوهاي ديده ميشوند. وزن هزار دانه 60-15 گرم و وزن هكتوليتر آن 75-65 كيلوگرم است قطر دانه آن 5/4-5/0 ميليمتر است. دانه سورگوم از پوسته 8% (3/9-8/7)، آندوسپرم 82% (6/84-80) و جنين 10% (1/12-8/7) تشكيل شده است (نورمحمدي، 1380). - اكولوژي سورگوم دماي 18 درجه سانتيگراد در مزرعه براي جوانهزني مناسب است و به ازاي هر 9/0 درجه سانتيگراد افزايش در ميانگين دماي خاك (در عمق 6/7 سانتي متر) از 13 تا 21 درجه سانتيگراد، فاصله زماني جوانهزني تا سبز شدن (ظهور گياهچه بر سطح خاك) يك روز كوتاهتر ميشود. دماي 48-40 درجه سانتيگراد در خاك براي اين مرحله از رشد مضر و كشنده است. درجه حرارت مطلوب براي رشد گياهچه، در حدود 33 درجه سانتيگراد است. اين درجه حرارت پيش از نمو رويشي گياه براي تبادل خالص CO2 مطلوب است بطوريكه با افزايش دما سرعت ظهور برگها افزايش مييابد. اما دماي مطلوب براي ظهور پنجهها نسبتاَ پايين و در روز و شب به ترتيب 20 و 15 درجه سانتيگراد برآورده شده است. رطوبت خاك در حد 20 تا 50 درصد ظرفيت زراعي براي جوانهزني مطلوب ميباشد. ميزان فتوسنتز خالص در سورگوم كه يك گونه C4 (چهار كربنه) است بيش از گندم است و با زياد شدن دما، افزايش مييابد، اما حد مطلوب آن احتمالاً در دماي 35 تا 40 درجه سانتيگراد فراهم ميشود. در گياهان 4 كربنه از جمله سورگوم چند عامل باعث بالا بودن ميزان فتوسنتز خالص و نيز بالا بودن كارايي مصرف آب ميشود، اين عوامل عبارتند از: مسير فتوسنتزي C4 و عدم انجام تنفس نوري كه از وضعيت خاص و كارايي آناتومي برگ موسوم به آناتومي كرانز (كوچك بودن سلولهاي مزوفيل و بالا بودن نسبت فضاي سلولي به حجم سلولي در مقايسه با ساير گونهها) ناشي ميشود. همچنين معلوم گشته است كه 76 تا 79% توده ريشهها و 60 تا 63% از طول ريشهها در لايه 0 تا 20 سانتيمتري خاك متمركز شدهاند (مظاهري، 1377). نهايت بالا بردن مقاومت گياه به تنشهاي خشكي از يك طرف و از طرف ديگر وجود بحران آب در كشورهاي مختلف، محققين كشورهاي مبتلا را بر آن داشته تا اين جنبه از رابطه همزيستي را بيش از پيش مورد بررسي و مطالعه قرار دهند. از ديگر فوائد رابطه همزيستي ميكوريزي ميتوان به افزايش مقاومت به شوري، افزايش مقاومت گياه به عوامل بيماريزاي ريشه، توليد هورمونهاي محرك رشد گياه، افزايش مقاومت گياه به تنشهاي ناشي از تراكم خاك، اصلاح ساختمان خاك، افزايش فعاليت تثبيت نيتروژن توسط انواع ديازوتروفها همزيست و هميار با گياهان، تشديد فعاليتهاي ميكروارگانيسمهاي حلكننده فسفات و افزايش كارايي مصرف كودهاي شيميايي، اشاره نمود (Lal..2000., ). سورگوم تحمل زيادي به خاکهاي شور تا قليايي از خود نشان ميدهد و خاک هاي کمي اسيدي را بهتر از ديگر شرايط ميپذيرد. در خاکهاي زهشکي شده و حاصلخيز بهتر رشد مي کند (زهتابيان و زارع چاهوکي، 1389) و ريشههاي آن به دليل داشتن مواد قندي بر رشد و نمو موجودات ذره بيني خاک ميافزايد (پورکاظم، 1387). - انواع سورگوم سورگوم را از لحاظ کاربرد آن به طور کلي به 4 دسته طبقه بندي ميکنند: 1-دانه-اي 2- قندي 3- جارويي 4- علوفهاي - سورگوم علوفهاي: از خصوصيات اين نوع سورگوم ساقههاي بلند، نازک و غني از مواد است. شاخه و برگ سورگوم علوفهاي بسيار زياد ميباشد، لذا براي علوفه کشت ميگردد. بذور سورگوم در موقع جوانهزدن، توليد يک ريشه اوليه جنيني ميکند. ريشههاي تاجي (دائمي) از محل گره انشعابات (مثل ساير غلات) در زير خاک بوجود ميآيند. سورگوم داراي سيستم ريشهاي بسيار توسعه يافته است. بيشترين ميزان ريشهها تا عمق 90 سانتيمتري خاک ديده ميشوند (در قسمت عرضي تا 40 سانتيمتري گسترش دارند). تقريبا 90 درصد از آب و مواد غذايي مورد نياز گياه بوسيله همين ميزان ريشه جذب ميگردد. از ديگر خصوصيات ريشهها، داشتن مقادير خيلي زيادي تار کشنده است که ميزان آن در يک سانتيمتر مربع 2 برابر بيش از ذرت است. ارقام سورگوم علوفهاي يک چينه معمولا بيشتر دو منظوره علوفهاي- دانهاي بوده که علوفه تر با دانه، عملکرد را تشکيل ميدهد و ارقام چند چينه معمولا به خاطر تعدد چينبرداري علوفه بيشتري توليد ميکنند و توليد بذر آنها ضعيف ميباشد (فومن و همکارن، 1385). - ترکيبات شيميايي موجود در سورگوم: سورگوم از گياهاني است که داراي ماده سمي موسوم به اسيد سيانيدريک (HCN) ميباشد بهطوريکه در علوفه خشک اين گياهان نيز سم مذکور به ميزان کم وبيش وجود دارد. گلوکوزيد سيانوژنتيکي بنام ديورين که در بخشهاي سبز گياه ضمن رشد آن توليد ميشود، در مرحله گلدهي به حداقل ميزان خود ميرسد. مقدار پروتئين سورگوم 3/12 درصد، هيدراتهاي کربن 8/73، املاح 65/1، چربي آن 9/3 درصد و مقدار آهن آن دو برابر گندم است (نورمحمدي و همکاران، 1386). (پورکاظم، 1387) سيلو و علوفه خشک سورگوم را ميتوان بدون خطر به مصرف تغذيه دام رساند (نورمحمدي و همکاران، 1386). - کاربرد سورگوم سورگوم در شمال و جنوب آمريکا، اروپا واستراليا به مصرف تغذيه دام ميرسد، اما در آسيا، آفريقا و آمريکاي مرکزي بيشتر مصرف خوراکي دارد و به عنوان غذاي انسان مصرف ميشود. سورگوم علوفهاي داراي اسيد هيدروسيانيک و آلکالوئيد هوردنين است. گياهان جوان داراي مقدار زيادي اسيد هيدروسيانيک هستند که نبايد براي تغذيه دام استفاده شوند زيرا مقدار کم آن (5/0 گرم) براي از پا درآوردن يک گاو کافي است. تغذيه با جوانههاي جوان جانبي و پنجههاي جوان ممکن است حتي باعث مرگ حيوان شود. مقدار اسيد هيدروسيانيک در سورگوم علوفهاي که برداشت شده و در آفتاب خشک شده باشد، کم ميشود و به طور کلي سيلو کردن علوفه باعث از بين رفتن آن ميگردد. با توجه به اينکه مقدار اسيد هيدروسيانيک واريتهها در مراحل مختلف رشد کاملاً متفاوت است، لذا انواعي از سورگوم علوفهاي را بايد انتخاب کرد که داراي اسيد هيدروسيانيک کمي باشند (المدرس و همکاران، 1387). در زير به چند مورد از موارد مصرف سورگوم اشاره ميشود: - مصارف خوراکي: در ايران سورگوم در توليد نان، بيسکوييت، غذاي دام وطيور مورد استفاده قرار ميگيرد. علاوه بر اين، قند مايع توليد شده از سورگوم در توليد محصولات غذايي مانند مربا و گز کاربرد دارد.غذاها و نوشيدنيهاي بسياري وجود دارند که از تخمير سورگوم معمولي حاصل ميشوند. اين محصولات تخميري تقريباً به شکل کامل خاص آفريقا ميباشند. از انواع خوراکي سورگوم، آرد و محصولات ديگر تهيه ميشوند. آرد سورگوم به لحاظ رنگ روشن و طعم ملايم نسبت به آرد ذرت برتري دارد. جدول1 مقدار ترکيبات موجود در آرد سورگوم ترکيبانرژي(کالري)آب(g)پروتئين(g)چربي(g)کربوهيدرات(g)فيبر(g)کلسيم(mg)پتاسيم(mg)فسفر(mg)سديم(mg)مقدار در 100 گرم34210107/37/722/222442428 - تغذيه حيوانات: عمدهترين مصرف سورگوم در تغذيه حيوانات است. سورگوم و ذرت اجزا اصلي غذاي خوک، پرندگان و گاو در نيمکره غربي ميباشند (خدابنده، 1369). معمولاً سورگوم براي اين مصارف به صورت بلغور در ميآيد. سورگوم براي پرورش ماهي و ساير غذاهاي آبي نيز استفاده شده است. - توليدات صنعتي: از ساقههاي سورگوم شيرين ميتوان شکر سفيد توليد کرد ولي با توجه به پائين بودن درصد خلوص (نسبت درصد وزن ساکارز به درصد وزن مواد محلول) (75 درصد) در مقايسه با چغندرقند و نيشکر (80 تا 85 درصد)، توليد شکر سفيد از سورگوم شيرين مقرون به صرفه نميباشد. بنابراين کربوهيدراتهاي موجود در سورگوم شيرين را ميتوان به صورت قند مايع در صنايع غذايي مصرف کرد (المدرس و همکاران، 1387). بايد توجه داشت که بيشترين ميزان قند موجود در ساقه سورگوم در مرحله رسيدن فيزيولوژيکي بوده و پس از آن به سرعت کاهش پيدا ميکند(Almodares., 2007 ؛ Almodares., 2006). - توليد اتانول و باگاس: نفت منبعي غيرتجديد شونده است و بايد به فکر جايگزينهاي پايدار براي نفت بود. يکي از منابع جايگزين استفاده از اتانول است از دانهها، ساقهها و باگاس (باقيمانده سورگوم پس از آبگيري) سورگوم شيرين ميتوان اتانول توليد کرد. اتانول اکسيژن بالايي دارد و به سوختن کامل سوخت کمک ميکند و اگر به عنوان ترکيب مکمل با بنزين استفاده شود، باعث ميشود اکتان بنزين بالا رفته و بهتر و تميزتر بسوزد و آلودگي کمتري ايجاد شود. سميت اتانول نسبت به ساير سوختها کمتر بوده و به راحتي در آب و خاک تجزيه ميشود. براي توليد اتانول از منابع مختلفي ميتوان استفاده کرد. در برزيل اتانول از نيشکر و در آمريکا از نشاسته ذرت بهدست ميآيد. ارقام سورگوم شيرين با داشتن 90 درصد کارايي تخمير و با توجه به اينکه از دانه وساقه آن ميتوان اتانول توليد کرد، پتانسيل بيشتري نسبت به ساير گياهان (ذرت و نيشکر) براي توليد اتانول دارند (المدرس و همکاران، 1387). سورگوم به دليل غني بودن از کربوهيدراتهاي ساختاري و غيرساختاري، يک محصول عالي براي تخمير بيهوازي و توليد بيواتانول است (McBee., 1982) . قند قابل تخمير بالاي ساقه سورگوم شيرين آن را براي تخمير به بيواتانول مناسب ميسازد. به دليل اينکه سورگوم شيرين داراي درصد بالاي ساکارز، گلوکز و فروکتوز است، به آساني توسط ميکروارگانيسمها به بيواتانول تبديل شده و گياه مناسبي براي توليد سوخت زيستي است. شربت سورگوم شيرين ميتواند به 85 درصد اتانول محاسبه شده يا 4/54 ليتر در 100 کيلوگرم وزن تر ساقه تبديل گردد (Almodares., 2009). منابع پورکاظم، ا.، 1387. اثر روش هاي مختلف کاشت رديفي بر سورگوم علوفه اي. نشريه علمي، اقتصادي، کشاورزي دامدار. 17 (204): 40 – 47 تايز، لينکلن و زايگر.1379. فيزيولوژي گياهي جلد دوم. ترجمه دکتر محمد کافي و همکاران. مشهد. انتشارات جهاد -دانشگاهي مشهد 379 ص. حاج بابائي، م.، عزيزي، ف و ک. زرگري 1390 تأثير تنش خشکي بر عملکرد علوفه تر و برخي صفات زراعي هيبريدهاي مختلف ذرت. فصلنامه علمي و پژوهشي گياه و زيست بوم.25 (7). 57-45 حجازي، ا، 1358، گياهان نواحي گرمسيري و نيمه گرمسيري، انتشارات دانشکده عمران روستائي دانشگاه ابو ريحان بيروني، 478 صفحه. زهتابيان، غ.ر.، زارع چاهوکي، م.ع.، 1389. مقايسه عملکرد و ميزان پروتئين در پنج رقم سورگوم علوفه اي در شرايط آب و هوايي خراسان جنوبي. نشريه زراعت (پژوهش و سازندگي). 88: 20 – 25 طالب نژاد، ع، 1373، بررسي و مقايسه عملکرد و ميزان پروتئين ارقام و هيبريدهاي جديد سورگوم علوفه اي، مرکز تحقيقات کشاورزي استان مرکزي عادلي، س. 1374. رابطهي شاخصهاي رشد و ميزان قندهاي ساقه در مراحل مختلف نمو در ارقام و لاينهاي سورگوم شيرين. پايان نامه کارشناسي ارشد علوم گياهي از دانشگاه اصفهان. فدايي، ع1386 بررسي اثر تنش خشکي بر برخي خصوصيات رشدي و عملکرد سه رقم ذرت دانهاي در منطقه کرمان. پايان نامه کارشناسي ارشد زراعت. دانشکده کشاورزي دانشگاه شهيد باهنر کرمان. فومن، ع.، 1389. ارزيابي صفات مورفولوژيک و عملکرد کمي و کيفي ارقام مختلف سورگوم علوفه اي. کيخاني، ف، گنجي خرم دل، ن.، فرازنجو، م.، کيخا، غ.، ثقفي، ک.، کيخا، م.، 1389. بررسي اثر کم آبياري بر عملکرد و کارائي مصرف آب محصول سورگوم علوفه اي در منطقه سيستان. مجله پژوهش آب در کشاورزي. 24 (1): 41 – 49. فومن، ع.، قنادها، م.ر.، حسين زاده، ع.، شکيب، ع.م، 1385. بررسي صفات کمي و کيفي ارقام جديد سورگوم علوفهاي در چين هاي مختلف. نهال و بذر. 22 (2): 215 – 224. فومن، ع.، مختارزاده، ع.ا.، بهشتي، ع.، شيري، م.ر.، راهنما، ع.، نادعلي، ف.، نورمحمدي، س.، حسن زاده مقدم، ه.، 1387. معرفي رقم. پگاه، رقم جديد سورگوم علوفه اي. نهال و بذر. 24 (2): 367 – 371. کريمي.، م، م. اصفهاني، م. ح. بيگل.ئي، و ع. قاسمي.1388. تأثير تيمارهاي آبياري بر صفات مورفولوژيک و شاخصهاي رشد ذرت علوفهاي در شرايط آب و هوايي رشت. مجله الکترونيک توليد گياهان زراعي. 2 (2). 110-91 کريمي، ه. 1384. زراعت و اصلاح گياهان علوفه اي. انتشارات دانشگاه تهران کريمي، ه، 1367، زراعت و اصلاح گياهان علوفه اي، انتشارات دانشگاه تهران، 414 صفحه. کليدري، ع.، موسوي نيک، س.م.، بهشتي، ع.، صفايي، م.، 1386. ارزيابي سرعت رشد محصول، صفات مورفولوژيک و عملکرد علوفه در ارقام مختلف سورگوم علوفه اي در منطقه مشهد. پژوهشنامه علوم کشاورزي. 1 (8): 37 – 52 کوچکي، ع. 1372، زراعت در مناطق خشک. انتشارات جهد دانشگاهي مشهد کوچکي،ع و ک، سرمد نيا 1379 فيزيولوژي گياهان زراعي. ترجمه انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد 400ص کوچکي، ع. و ع. ح. سرمدنيا. 1379. فيزيولوژي گياهان زراعي. ترجمه. انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد گالشي، س، 1371، مقايسه عملکرد چهار رقم و توده سورگوم علوفه اي در گنبد، مجله علمي و پژوهشي دانشگاه علوم کشاورزي گرگان جلد 2 شماره 2 صفحه 76-69. المدرس، ع.، ر. طاهري و و. صفوي. 1387. سورگوم (گياه شناسي، زراعت و بيوتکنولوژي). انتشارات جهاد دانشگاهي واحد اصفهان.264 صفحهمجله علوم گياهان زراعي. 41 (4): 833 – 840 مظاهري، د.، م. آقا عليخاني. 1377. بوم شناسي گياهان گرمسيري. تاليف نورمن، ام، جي. سي، پيرسون و پي، سيرل. انتشارات دانشگاه تهران. نباتي، ج. و ر. مقدم. 1389. اثر فواصل آبياري بر عملکرد و خصوصيات مورفولوژيکي ارزن، سورگوم و ذرت علوفهاي.41 (1). 179-186. نور محمدي، ق و ع، سيادت و ع، کاشاني،1377، زراعت غلات (ترجمه)، انشارات دانشگاه شهيد چمران، 446صفحه ولد آبادي، س.ع.، مظاهري، د.، نورمحمدي، ق.، هاشمي دزفولي، س.ا.، 1379. بررسي اثر تنش خشکي بر خواص کمي و کيفي و شاخص هاي رشد ذرت، سورگوم و ارزن. مجله علوم زراعي ايران. 2 (1): 39 – 47. Abdul Jaleel C., Riadh K., Gopi R., Manivannan P., Ines J., Al-Juburi H. J.,Chang-Xing Z., Hong-Bo S. and Panneerselvam R. 2009. Antioxidand Acevado, E., T. C. Hesiao and D. W. Handerson. 1971. Immediate and subsequent growth responses of mais leaves to chnges in water statues. Plant Physiol. 48: 631-639. Agarawal S., Sairam R. K., Srivasta G. C. and Meena R. C. 2005. Changes in antioxidant enzymes activity and oxidative stress by abscisic acid and salicylic acid in wheat genotypes. Biol. Plant, 49(4): 541-550. Agboma, P., T. Sinclair, K. Jokinen, P. Peltonen-Sainio and E. Pehu. 1997. An evaluation of the effect of exogenous glycine betaine on the growth and yield of soybean. Field Crops Research, 54: 51–64. Agboma, P.C., Sinclair, T.R., Jokinen, K., Peltonen-Sainio, P., Pehu, E., 1997. An evaluation of the effect of exogenous glycine betaine on the growth and yield of soybean: timing of application, watering regimes and cultivars. Field Crops Res. 54, 51–6 Agenbay, G. A. 1995. Physiological response of spring wheat cultivare to post-anthesis water stress and intensity. Sourth African. J. Plant Sci. 12: 27-31. Aldesuquy, HS., Mankarios AT., Awad HA (1998). Effect of some antitranspirants on growth, metabolism and productivity of salinetreated wheat plants. Induction of stomatal closure, inhibition of transpiration and improvement of leaf turgidity. Acta Bot Hungarica 41:1–10. Alia, Saradhi, P.P., Mohanty, P., 1997. Involvement of proline in protecting thylakoid membranes against free radical induced photodamage. J. Photochem. Photobiol. 38, 253–257. Allard, F., M. Houde, M. Krol, A. Ivanov, N. P. A. Huner, and F. Sarhan. 1998. Betaine improves freezing tolerance in wheat. Plant Cell Physiology, 39: 1194-1202 Almodares, A., and M.R. Hadi. 2009. Production of bioethanol from sweet sorghum: A review. African Journal of Agricultural Research 4:772-780. Almodares, A., and M.R. Hadi. 2009. Production of bioethanol from sweet sorghum: A review. African Journal of Agricultural Research 4:772-780. Almodares, A., and S.M. Mostafafi Darany. 2006. Effects of planting date and time of nitrogen application on yield and sugar content of sweet sorghum. Journal of Environmental Biology 27:601-605. Almodares, A., M.R. Hadi, M. Ranjbar, and R. Taheri. 2007. The effects of nitrogen treatments, cultivars and harvest stages on stalk yield and sugar content in sweet sorghum. Asian J. Plant Sci 6:423-426. Almodares, A., R. Taheri, and S. Adeli. 2008b. Stalk yield and carbohydrate composition of sweet sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench] cultivars and lines at different growth stages. J. Malesian Appl. Biol 37:31-36. Antolin, M., J. Yoller, and M. Sanchez- Diaz. (1995). "Effects of temporary drought on nitrate-fed and nitrogen-fixing alfalfa plants." Journal of Plant Science 107(2): 159-165. Baghizadeh A., Hajmohammadrezaei.M.(2011). Effect of drought stress and its interaction with ascorbate and salicylic acid on okra (hibiscus esculents l.) germination and seedling growth. journal of stress physiology & biochemistry, vol. 7 no. 1 2011, pp. 55-65 issn 1997-0838 Barkosky, RR., Einhellig FA (1993). Effects of salicylic acid on plant–water relationships. J Chem Ecol 19:237–247. Bartosz G. 1997. Oxidative stress in plants. Acta Physiol. Plant., 19(1): 47-64. Bartosz G. 1997. Oxidative stress in plants. Acta Physiol. Plant., 19(1): 47-64. Ben Hamed K., Castagna A., Salem E., Ranieri A. and Abdelly C. 2007. Sea fennel (Cirthmum Maritimum L.) under salinity conditions: a comparison of leaf and root antioxidant responses. Plant Growth Regul., 53: 185-194. Berenguer, M. and J. Faci (2001). "Sorghum (Sorghum bicolor L. Moench) yield compensation processes under different plant densities and variable water supply." journal of European agronomy 15(1): 43-55 Berenguer, M. and J. Faci (2001). "Sorghum (Sorghum bicolor L. Moench) yield compensation processes under different plant densities and variable water supply." journal of European agronomy 15(1): 43-55. Blum, A 1973. Components analysis of yield responses to drought of sorghum hybrid, EXP. Agric, 9:159-167 Borsani O., Valpuest V. and Botella M. A. (2001) Evidence for a role of salicylic acid in the oxidative damage generated by Nacl and Osmotic Stress in Arabidopsis seedlings. Plant Physiol., 126: 1024-1030 Borsani, O., Valpuesta, V.and Botella, M.A. (2001). Evidence for a role of salicylic acid in the oxidative damage generated by NaCl and osmotic stress in Arabidopsis seedlings. Plant Physiol. 126:1024–1030. Boyer, J. S. 1970. Leaf enlargement and metapolic rates in corn, soybeans, and sunflower at various leaf water potentials. Plant Physiol. 46: 233-235 Butler, G. L. 1990. Tannins and other phenols: Effects on sorghum production and utilization. Pages 140-144. INTSORMIL Annual Report, 1990. A technical research report of the grain sorghum / pearl millet collaborative research support program (CRSP). Çakir, R. (2004). "Effect of water stress at different development stages on vegetative and reproductive growth of corn." Journal ot Field Crops Research 89(1): 1-16. carbohydrate metabolism in salt-stressed maize plants. Int. J. Agri. Biol., 6: 5–8. Castrillo, M. & Trujillo, I. (1994). Ribulose-1-5, biphosphate carboxylase activity & chlorophyll & protein content in two cultivars of French bean plants under water stress & rewatering. Photosynthetic, 30, 175-181 Castrillo, M. & Trujillo, I. (1994). Ribulose-1-5, biphosphate carboxylase activity & chlorophyll & protein content in two cultivars of French bean plants under water stress & rewatering. Photosynthetic, 30, 175-18 Chapmane, P. a. M. E. W. (1999.). "Water deficit receptivity of maiz silk." journal of Crop Scince. 33(2): 279-282 Chen, C., Dickman, M.B., 2005. Proline suppresses apoptosis in the fungal pathogen of Colletotrichum trifolii. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A 102, 3459–3464. Chen, C., Dickman, M.B., 2005. Proline suppresses apoptosis in the fungal pathogen of Colletotrichum trifolii. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A 102, 3459–3464. Cho, K.,H. Tder, J. Iee and R. Auge. 2006. Mycorrhizal symbiosis and ewsponse of sorghum to combined drought and salinity stress. J. of plant phisio. 163: 517-528 Clough, A. & Hunter, M. N. (2003). Stem diameter: A rapid accurate parameter for monitoring growth of sorghum. In: Proceedings of the 11th Australian Agronomy Conference. Geelong. Retrieved June 22, 2005, from http:/www.regional. org. au /au /asa/2003/p/4/clough.htm Cosculleo, F. a. J. M. F. (1992). "Determination of the Maize ( Zea Maize L.) yield funcationsip respect to water using a line source sprinkle." journal of Field Crop Science 93: 5611-5620. Dahlberg, J. A., and Spinks, M. S. 1995. Current status of the US Sorghum Germplasm Collection. International Sorghum and Millet Newsletter 36: 4-12 Dat, J.F., Lopez-Delgado, H., Foyer, C.H and Scott, I.M (1998). Parallel changes in H2O2 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings. Plant Physiol. 116:1351-1357. Debaeke, P. and A. Aboudrare. 2004. Adaptation of crop management to water-limited environments. Eur. J. Agron. 21: 433-446. defense responses: Physiological Plasticity in higher plants under abiotic constrains. Acta Physiol. Plant, 31: 427-436. Delany T.P., Uknes S., Vernooij B., Friedrich L., Weymann K., Negrotto D., Gaffney T., Gut-Rella M., Kessmann H., Ward E., and Ryals J. 1994. A central role of salicylic acid in plant disease resistance. Science, 266: 1247-125. Du Y.C., Nose A., Wasano K., and Ushida Y. 1998. Responses to water stress of enzyme activities and metabolite levels in relation to sucrose and starch synthesis, the Calvin cycle and the C4 pathway in sugarcane (Saccharum sp). Australian Journal of Plant Physiology, 25:253 – 260. Earl, H.J. and Davis, R.F., 2003. Effect of drought stress on leaf and whole canopy radiation use efficiency and yield of maize. Agronomy Journal. 95: 688- 696 Efeoğlu, B., Ekmekçi, Y., Çiçek N.,2009. Physiological responses of three maize cultivars to drought stress and recovery South African Journal of Botany. 75, 34–42 Ejeta, G. and J. Axtell. 1990. Development of hard endosperm high lysine sorghums. In: Proceedings of an International Conference on Sorghum Nutritional Quality. Ejeta, G. Mertz, E.T., Rooney, L.W. Eraslan F., Inal A., Gunes A., and Alpaslan M. 2007. Impact of exogenous salicylic acid on growth, antioxidant activity and physiology of carrot plants subjected to combined salinity and boron toxicity. Scientia Horticulturae,113: 120–128 Eraslan F., Inal A., Gunes A., and Alpaslan M. 2007. Impact of exogenous salicylic acid on growth, antioxidant activity and physiology of carrot plants subjected to combined salinity and boron toxicity. Scientia Horticulturae,113: 120–128 FAO. 1994. The world sorghum and millet economies: facts, trends and outlook. Faridoddin Q., Hayat S. and Ahmad A. 2003. Salicylic acide influences netphotosynthetic rate, carboxilation efficiency, nitrate reductase activity and seed yield in Brassica juncea. Photosynthetica, 41: 281-284. Hayat S. and Ahmad A. 2007. Salicylic acid: a plant hormone. Speringer. House, L.R. 1985. A guide to sorghum breeding. 2nd ed.: ICRISAT, India Howell, T. 2001. Enhancing water use efficiency in irrigated agriculture. Agron. J. 93:281-189. Hua, B., Guo, W.Y., 2002. Effect of exogenous proline on SOD and POD activity of soybean callus under salt stress. Acta Agric. Boreali-Sinica 17, 37–40. Hussain M., Malik M.A., Farooq M., Ashraf M.Y., Cheema M.A. (2008) Improving Drought tolerance by exogenous application of glycinebetaine and salicylic acid in sunflower, J. Agron. Crop Sci. 194, 193–199. Hussein M.M., Balbaa L.K., and Gaballah M.S. 2007. Salicylic acid and salinity effects on growth of maize plants. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences, 3: 321-328. Iqbal, N., Ashraf, M. and Ashraf, M.Y. (2008) Glycinebetaine, an osmolyte of interest to improve water stress tolerance in sunflower (Helianthus annuus L.): water relations and yield. South African J. Bot., 74: 274-281 Jaleel, C. A., P. Manivannan,A. Wahid, M. Farrooq and H.Dmjm. (2009). "Drought stress in plants: a review on morphological characteristics and pigments composition." Journal of Agricaltural and Biology 11: 100-105. Janda, T., Szalai, G. Tari, I and Paldi, E. (1999). Hydroponic treatment with salicylic acid decreases the effects of chilling injury in maize (Zea mays L.) plants. Planta 208:175-180. Jekendra, Y. (1999). " Physica and morphologyical properties of forage crop with refrence to cutting Archivesde." Journal of Polymer Since and Technology 59: 37- 49. Jiand, Y. a. B., hung (2001). "Drought and heat strress injury to two cool season turf grasses in relaition to ontioxidant metabolism lipid proxidation." Journal of Crop Science 44(1): 436-442. Jithesh M. N., Prashanth S. R., Sivaprakash K. R. and Parida A. K. 2006. Antioxidative response mechanisms in halophytes: their role in stress defense. J. Genetics, 85 (3): 237-254. Jolivet, Y., F. Lahrer, J. Hamelin. 1982. Osmoregulation in higher plants: the protective effect of glycinebetaine against the heat destabilization of membranes. Plant Science Letters, 25: 193-201. Juan M., Rivero R. M., Romero L. and Ruiz J. M. 2005. Evaluation of some nutritional and biochemical indicators in selecting salt-resistant tomato cultivars. Environ. Exp. Bot., 54: 193-201. Kang, S., W. Zhang (2000). "An improved water-use efficiency for maize grown under regulated deficit irrigation." journal of Field Crops Research 67(3): 207-214 Kang, Sh., Shi, W. & Zhang, J. (2000). An improved water-use efficiency for maize grown under regulated deficit irrigation. Field Crops Research, 67, 207-214. Karyudi, and R. J. Fletcher. 2003. Osmoregulation in birdseed millet under conditions of water stress II. Variation in F3 lines of Setaria italic and its relationship to plant morphology and yield. Euphytica 132: 191-197. Kaya, M.D., Okçub, G., Ataka, M., Çıkılıc, Y., Kolsarıcıa, Ö., (2006) Seed treatments to overcome salt and drought stress during germination in sunflower (Helianthus annuus L.), Eur. J. Agron. 24, 291–295. Khan W., Prithviraj B. and Smith D. l. 2003. Photosynthetic response of com and soybean to foliar application of salicylates. J. Plant Physiol., 160: 485-492. Khan, A., and M. Ashraf. 1993. Water relations and drought tolerance in two wheat varieties undea water stress. Pakis. J. Sci. Indust. Res. 36: 151-155. khanova, E. A., Fedina A. B., Kulaeva O. N., (1999). Effect of salicylic acid and (2´-5´)- oligoadenylates on protein synthesis in tobacco leaves under heat shock conditions: comparative study. Russ. J. of Plant Physiol., 46, 16–22. Khodary S. E. A. 2004. Effect of salicylic acid on the growth, photosynthesis and Kholova, J., C.T. M. Hasan, M.Khocova and V. Vadie. (2011). "Doesa terminal drought tolerance Q TL contribute to differences in ros scavenging enzymes and photosynthetic pigments in pear millet exposed to drought ? ." journal of Environmental and Experimental Botany. 71 (2): 99-106. Koyro H. W. 2006. Effect of salinity on growth, photosynthesis, water relatinns and solute composition of potential cash crop halophyte Plantago coronopus (L.). Environ. Exp. Bot., 56:136-149. Kuzniak E. 2004. Ascorbate and ascorbate-dependent enzmes in derached tomato leaves under coditions modulating the ascorbate pool. Acta Physiol. Plant, 26(3): 1-6. Lafitte, R., 2002. Relationship between leaf relative water content during reproductive stage water deficit and grain formation in rice. Field Crops Reaseachers. 76: 165-174. Lal, L. 2000. Phosphatic Biofertilizer. Agrotech Publishing Academy P. 224 Lawlor, D.W. 2002. Limitation to photosynthesis in Water-stressed leaves: Stomata vs. metabolism and the role of ATP. Annals of Botany. 89: 871-885 Lawlor, D.W., and Cornic, G., 2002. Photosynthetic carbon assimilation and associated metabolism in relation to water deficits in higher plants. Plant, Cell and Environment. 25: 275-294. Lerma, C., P.J. Rich, G.C. Ju, W. Yang, A.D. Hanson and D. Rhodes, 1991. Betaine deficiency in maize. Complementation tests and metabolic basis. Plant Physiology, 95: 1113–1119. Loggini B., Scartazza A., Brugonli E. and Navari-Izzo F. 1999. Antioxidative defense system, pigment composition, and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to drought. Plant Physiol., 119: 1091-1099. Lopez, C.M.L., H., Takahashi, and S., Yamazaki. 2002. Plant-water relations of kidney bean plants treated with NaCl and foliarly applied glycinebetaine. Journal of Agronomy Crop Science. 188: 73–80. Maclagan, J. L. 1993. Effect of water stress on the water relation in brassica species, Can. J. of Plant Sci. 73: 225-529. Mafakheri, A., Siosemardeh,A., Bahramnejad, B., Struik, P.C., Sohrabi E., 2010. Effect of drought stress on yield, proline and chlorophyll contents in three chickpea cultivars. AJCS .4(8), 580-585 Makela, P., K. Jokinen, M. Kontturi, P. Peltonen-Sainio, E. Pehu and S. Somersalo. 1998. Foliar application of glycine betaine – a novel product from sugarbeet – as an approach to increase tomato yield. Industrial Crops and Prodcts, 7: 139–148. Malekian, R., J. Abedi-Koupai,and S. Eslamian. (2011). "Influences of clinoptilolite and surfactant-modified clinoptilolite zeolite on nitrate leaching and plant growth." Journal of Hazardous Materials 185(2): 970-976. Martin, Y. H., Leonard, W. H. and D. L. Stamp. 1986. Principles of field crop production. Macmillam publishing Co. Inc Martınez, J.P., Silva, H., Ledent, J.F. and Pinto. M., 2007. Effect of drought stress on the osmotic adjustment, cell wall elasticity and cell volume of six cultivars of common beans (Phaseolus vulgaris L.). Europ Journal Agronomy. 26: 30- 38 Masood A., Shab N. A., Zeeshan M. and Abraham G. 2006. Differential response of antioxidant enzymes to salinity stress in two varieties of Azolla (Azolla pinnata and Azolla filiculcides). Environ. Exp. Bot., 58: 216-222 Matysik J., Alia A., Bhalu B. and Mohanty p. 2002. Molecular mechaanisms of quenching of reactive oxygen species by proline under stress in plants. Current Sci., 82(5): 525-532. McBee, G.G.M. 1982. Carbohydrates in Sorghum Culms as Influenced by Cultivars, Spacing, and Maturity over a Diurnal Period. Crop Science 22:381-385. Meek, C., Oosterhuis, D. and Gorham, J. (2003): Does foliar-applied glycine betaine affect endogenous betaine levels and yield in cotton? Online. Crop Management doi 10.1094/CM- Mohanty, A., H. Kathuria, A. Ferjani, A. Sakamoto, P. Mohanty, N. Murata and A.K. Tyagi. 2002. Transgenics of an elite indica rice variety Pusa Basmati1 harbouring the codA gene are highly tolerant to salt stress. Theorretical and Applied Genetics, 106: 51–57. Mohsenzadeh, S., A. M. Malboobi, K. Razavi. and S. Farrahi- Aschtiani. (2006.). "Physiological and Molecular responses of Aluropus lagopoides (poaceae) to water deficite." journal of Environmental and Experimental Botany. 56(1): 314-322. Murillo A., Lopez B.R., Aguilar C., Kaya T., Larrinaga A., Flores H. (2002) Comparative effects of NaCl and Polyetylene glycol on germination, emergence and seedling growth Mنkelن, P., Jokinen, K., Kontturi, M., Peltonen-Sainio, P., Pehu, E., Somersalo, S., 1998a. Foliar application of glycine betaine – a novel product from sugar beet – as an approach to increase tomato yield. Ind. Crops P rod. 7, 139–148 Naidu, B.P., P.R., Morris, and D.F., Cameron.1996. Treatment with glycinebetaine to increase seed germination, seedling vigour and yield of cotton. Proceedings of 8th Australian Conference, Gold Coast. Nemeth M., Janda T., Horvath E., Paldi E. and Szalai G. 2002. Exogenous salicylic acid increase polyamine content but may decreases drought tolerance in maize. Plant Sci., 162: 569-574. Nesmith, D. S. and . J. Rithe. 2002.). "Shorth and long term responses of corn to a pre- anthesis soil water deficite. ." journal of Agronomy and Crop Science 84(1): 107-113. . Noctor, G. and CH. Foyer. 1998. Ascorbate and glutathione: Keeping active oxygen under control. Annu. Rev of Plant Physiol and Plant Mol. Biol. 49: 249-279 Nomura, M., T., Hibino, T., Takabe, T., Sugiyama, A., Yokota, H., Miyake, and T., Takabe. 1998. Transgenically produced glycinebetaine protects ribulose 1, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase from inactivation in Synechococcus sp. PCC 7942 under salt stress. Plant Cell Physiology. 39: 425-432 Ober, E.S., Bloa, M.L., Clark, C.J.A., Royal, A., Jaggard, K.W. and Pidgeon, J.D., 2005. Evaluation of physiological traits as indirect selection criteria for drought tolerance in sugar beet. Elsevier Science. 10: 231- 249. of cowpea. J Agron Crop Sci. 188, 235-247 oncel, I., Y. Kelesand A, S. Ustuh (2000). "Interactive of temperatur and heavy metal stress on the growth and some biological compounds in wheat seadling." Journal of Environmental Pollution 107(2): 315-320. Oneill, P.M., Shanahan, J.F. and Schepers, J.S., 2006. Use of chlorophyll fluorescence assessments to differentiate corn hybrid response to variable water conditions. Crop Science, vol. 46. Osborne, S., J. S. Schepers, et al. (2002). "Detection of phosphorus and nitrogen deficiencies in corn using spectral radiance measurements." Journal of Amrican Journal Agricaltural and Biology Science 2(1): 115-121. Paleg, L.G., G.R., Stewart, and R., Starr, 1985. The effect of compatible solutes on proteins. Plant and Soil 89: 83- 94. Pancheva T. V., Popva L. P. and Uzonova A. M. 1996. Effect of salicylic acid on growth and photosynthesis in barley plants. J. Plant Physiol., 149: 57-63. Panda, R., S. Behera, and P.S. Kashyap. (2004). "Effective management of irrigation water for maize under stressed conditions." Journal of Agricultural water management 66(3): 181-203. Parida A. K. and Das A. B. 2005. Salt Tolerance and salinity effects on plants: review. Ecotox. Environ. Safe., 60: 324-349. Parrish, D.J., Ervin, E.H. nad Seiler, J.R., 2006. Studies with triazoles to alleviate drought stress in greenhouse- grown maize (Zea mays L.) seedlings. 123 page Parry, M.A.J., Andraloje, P.J., Khan, S., Lea, P.J. and Keys, A.J., 2002. Rubisco activity: Effects of drought stress. Annals of Botany. 89: 833- 839. Passiora, j. B. 1972. The effect of root geometry an the yield of wheat growing on stored water. Aust. J. Agric. Res. 23: 745: 752 Passioura J.B. (2007). The drought environment: physical, biological and agricultural perspectives. J. Exp. Bot. 58(2), 113-117 Pereira, L.S., Oweis, T., Zairi, A. 2002. Irrigation management under water scarcity. Agr. Water Manage. 57: 175-206. Pignocchi, C. and CH. Foyer. 2003. Apoplastic ascorbate metabolism and its role in the regulation of cell signaling. Current Opinion in Plant Biol. 6: 379–389 Ping, B., Fang- Gong, S., Ti- Da G., Zhao- Hui, S., Yin- Yan, L. and Guang- Sheng Z., 2006. Effect of soil drought stress on leaf water status, membrane permeability and enzymatic antioxidant system of maize. Pedosphere. 16(3): 326- 332 Plaut, Z., 2003. Plant exposure to water stress during specific growth stages, Encyclopedia of Water Science, Taylor & Francis, pp. 673– 675 Popova L., Ananieva V., Hristova V., Christov K., Geovgieva K., Alexieva V. and Stoinova Z. 2003. Salicylic acid and methyl Jasmonate-induced protection on photosynthesis to paraquat oxidative stress. Bulg. J. Plant Physiol., Special Issus: 133-152. Rajasekaran, LR, Blake TJ (1999). New plant growth regulators protect photosynthesis and enhance growth under drought of jack pine seedlings. J Plant Growth Regul 18:175–181. Raskin, I, (1992). Role of salicylic acid in plants. Annu. Rev. Plant Physiology Plant Mol. Biol.,43 439–463. Ritchie, S. and T. Henry. 1990. Leaf water content and gas ezchange parameters of two wheat genotypes differing in drought resistance. Crop Sci. 30: 105-111. Sahu G. k., Kar M. and Sabay S. C. 2002. Electron transport activities of isolated thylakoids form wheat plants grown in salicylic acid. Plant Biol., 4: 321-328. Sairam R. K. and Tyagi A. 2004. Physiology and molecular biology of salinity stress tolerance in plants. Currents Sci., 86(3): 407-421. Saleem, A., U. Saleem, and G. M. Sublani. (2007). "Correlation and path coefficient analysis in maize (Zea mays L.)." Journal of Agricultural Research 45:110-114. Santiago, L. S., T.S. Lau, P.J. Melcher, O. Coin. and G. Godeein. (2000). "Morphological and physiological responses of Hawalian Hibis Cas tilaceus population to light , salinity and drought ." journal of Plant Soil. 161(1): 99-106. Schlemmer, M.R, Francis, D.D., Shanahan, J.F., and Schepers, J.S., 2005. Remotely measuring chlorophyll content in corn leaves with differing nitrogen levels and relative water content. Agronomy Journal, vol. 97. Schonfeld, M. A., R. C. Johnson, B. F. Carver, and D. W. Mornhinweg. 1988. Water relation in winter wheat as drought resistance indicators. Crop Sci. 28: 526-531. Shah F.S., Watson C.E., Cabera E.R. (2002). Seed vigor testing of subtropical Corn hybrids . Research Rep. 23(2), 56-68 Shakirova F. M., Sakhabutdinova A. R., Bozrutkova M. V., Fatkhutdinova R. A. and Fatkhutdinova D. R. 2003. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity. Plant Sci., 164: 317-322. Shalata, A. and P. M. Neumann. 2001. Exogenous ascorbic acid (vitamin C) increases resistance to salt stress and reduces lipid peroxidation. J. Experim. Bot. 52: 2207–2211. Shukry, W. M. (2001). "Effect of Soil Type on Growth Vigour, Water Relations, Mineral Uptake and." Pakistan Journal of Biological Sciences 4(12): 1470-1478. Sinaki, J., G. Nourmohamadi. and A. Malki. ( 2004.). "Effect of water defficiti on Seedling, planties and compatible solutes of forage sourghum 4th International Crop Science Congress."100-107. Smirnoff, N. 2000. Ascorbic acid: metabolism and functions of a multi-facetted molecule. Current Opinion Plant Biol. 3: 229–235 Sofo A., Tuzio A. C., Dichio B. and Xiloyannis C. 2005. Influence of water deficit and rewatering on the components of the ascorbate-glutathione cycle in four interspecific peunnus hybrids. Plant Sci., 169: 403-412. Sonon, R. N., Suazo, R., Pfaff, L., Dickerson, J. T. & Bolsen, K. K., 1990. Effects of maturity at harvest and cultivar agronomic performance of forage sorghum and the nutritive value of selected sorghum silages. (Report of Progress 629.) Agricultural Experiment Station Kansas State University, Manhattan, Waltcr. R. Woods. Director Xu, W., Rosenowd, T., and Nguyenh, T., 2007. Stay green trait in grain sorghum: relationship between visual rating and leaf chlorophyll concentration. Plant Breeding. 119: 365–367. Yang, W.J., P.J. Rich, J.D. Axtell, K.V. Wood, C.C. Bonham, G. Ejeta, M.V. Mickelbart and D. Rhodes. 2003. Genotypic variation for glycine betaine in sorghum. Crop Science, 43:162–169.